Plateforme en histologie

À la suite d’une fixation dans le paraformaldéhyde, les tissus sont déshydratés afin de permettre leur inclusion dans la paraffine. Les tissus ayant été fixés par une autre méthode (bouin, formaline, formol) sont traités de façon individuelle. 

À la suite de la circulation, les tissus sont inclus dans de la paraffine afin de permettre des coupes tissulaires très minces (4-5μm). Les tissus fixés suivant cette méthode ne peuvent pas être utilisés pour détecter les antigènes labiles ou isoler l'ADN/ARN (option: congélation des tissus frais). 

À la suite de la circulation, les tissus sont inclus dans de la paraffine afin de permettre des coupes tissulaires très minces (4-5μm). Les tissus fixés suivant cette méthode ne peuvent pas être utilisés pour détecter les antigènes labiles ou isoler l'ADN/ARN (option: congélation des tissus frais). 

Les tissus frais sont inclus dans un composé « d’O.C.T. ». Cette technique solidifie les tissus permettant des coupes très minces. Les tissus non fixés et congelés conservent leur antigénicité, mais démontrent une préservation morphologique inférieure. Ce type de congélation convient à la détection d’antigènes labiles et à l’isolement de l’ADN/ARN. 

Les tissus sont fixés de façon légère et congelés rapidement OU inclus dans des résines permettant de préserver l'immunoréactivité des tissus. 

Des coupes tissulaires très minces (4-5μm) séquentielles ou non-séquentielles, provenant de matériel inclus en paraffine, sont effectuées. Elles permettent les études morphologiques, histologiques et immunohistochimiques. 

Des coupes tissulaires très minces (4-5μm) non-séquentielles, provenant de tissus frais congelés dans l’O.C.T, sont effectuées. Elles permettent d’obtenir un diagnostic rapide ou pallier les problèmes de fixation menaçant l’intégrité des constituants cellulaires. Cependant, la morphologie des tissus n’est pas maintenue de manière optimale.  

Les colorations disponibles pour l’histologie sont l’hématoxyline et éosine, l’alcian bleu, l’acide périodique de Shiff, trichrome de Masson, Sirius Red et Oil Red-O. Le développement de colorations particulières ou spécialisées est possible sur demande. Les colorations de routine constituent les premières étapes du processus permettant l’examen microscopique des tissus pour identifier certains constituants cellulaires.

Les lames sont numérisées entièrement à la résolution souhaitée, en lumière blanche ou en fluorescence, via le scanner de lames « NanoZoomer ». Après la numérisation, une image virtuelle de la lame histologique entière peut être affichée et évaluée sur un moniteur via le logiciel NDP view et remplace ainsi l’évaluation via un microscope traditionnel, en conservant la faculté de faire un grossissement de plusieurs centaines de fois sur toute zone d’intérêt. Les lames virtuelles sont donc représentatives du contenu biologique des lames physiques. 

Permet de déterminer la localisation cellulaire ou intracellulaire de protéines reconnues de manière spécifique par leur anticorps. Les techniques utilisées au niveau histologique sont l’immunohistochimie et l’immunofluorescence.